一、規(guī)模化制備策略

　　組織采集與預處理

　　選擇健康成年豬，迅速剖取肝臟后立即用預冷的生理鹽水或勻漿介質(zhì)（如含0.1mmol/LEDTA的0.25mol/L蔗糖-Tris-HCl緩沖液，pH7.4）沖洗，去除殘留血液和結(jié)締組織。肝臟剪碎后按1:3-1:5（w/v）比例加入緩沖液，使用勻漿器在低溫下勻漿至無可見顆粒，制成肝勻漿。

　　差速離心分離

　　將勻漿液在4℃條件下進行梯度離心：

　　第一步離心：600-1000g離心5-10分鐘，去除細胞核、線粒體等沉淀，收集上清液。

　　第二步離心：將上清液于10,000-20,000g離心20-30分鐘，棄沉淀，進一步去除線粒體和溶酶體。

　　第三步離心：將上清液于100,000-105,000g超速離心60分鐘，棄上清，沉淀即為肝微粒體。

　　優(yōu)化點：通過調(diào)整離心速度和時間，可平衡微粒體純度與收率，規(guī)模化制備時建議采用連續(xù)流離心機提高效率。

　　洗滌與重懸

　　用適量緩沖液（如0.05mol/LTris-HCl，pH7.4）重懸微粒體沉淀，再次超速離心（100,000g，60分鐘）以去除殘留雜質(zhì)。最終沉淀重懸于含20%甘油的緩沖液中，分裝保存。

　　二、活性鑒定方法

　　蛋白濃度測定

　　采用BCA法或Lowry法測定微粒體蛋白濃度，確保每批次蛋白含量穩(wěn)定（通常為5-20mg/mL）。

　　細胞色素P450（CYP450）含量測定

　　通過CO差示光譜法測定CYP450含量：將微粒體樣品稀釋至0.3-0.5mg/mL，加入少量連二亞硫酸鈉（Na?S?O?）還原后通入CO氣體，測定450nm與490nm波長處的吸光度差值（ΔA），計算CYP450含量（nmol/mg蛋白）。

　　標準：優(yōu)質(zhì)豬肝微粒體CYP450含量通常為0.5-1.5nmol/mg蛋白。

　　酶活性測定

　　探針底物法：選用特異性探針底物與微粒體孵育，通過HPLC或LC-MS/MS檢測代謝產(chǎn)物生成量，反映CYP450亞型（如CYP1A2、CYP3A4）活性。

　　NADPH消耗法：測定孵育體系中NADPH在340nm處的吸光度下降速率，間接反映CYP450整體活性。

　　活性驗證實驗

　　通過添加CYP450抑制劑（如α-萘黃酮、酮康唑）觀察代謝抑制效果，確認酶活性特異性。

　　三、長期保存策略

　　低溫保存

　　將分裝后的微粒體置于-80℃或液氮中保存，可穩(wěn)定維持酶活性長達2年以上。避免反復凍融，建議按單次實驗用量分裝（如0.5-1mL/管）。

　　添加保護劑

　　甘油：重懸緩沖液中添加20%甘油可降低溶液冰點，減少冰晶形成對微粒體結(jié)構(gòu)的破壞。

　　抗氧化劑：加入1-5mmol/LDTT或β-巰基乙醇，抑制氧化反應導致的酶失活。

　　冷凍保護劑：對于需長期保存的樣品，可添加5-10%DMSO（需驗證對酶活性的影響）。

　　密封與避光

　　使用無菌、無酶的離心管封裝樣品，確保密封性以防止水分進入。保存容器外層加裹鋁箔或置于避光盒中，避免光照引起的酶降解。

　　標簽與記錄

　　每管樣品需標注名稱、濃度、生產(chǎn)日期、有效期及儲存條件。建立庫存管理系統(tǒng)，定期檢查樣品狀態(tài)，及時淘汰過期或活性下降的樣品。